ФЕДЕРАЛЬНЫЙ НАУЧНЫЙ ЦЕНТР ОВОЩЕВОДСТВА: ВЕКОВАЯ ИСТОРИЯ КАК ФУНДАМЕНТ РАЗВИТИЯ
(обзор)

В статье представлены материалы по истории образования первого овощеводческого научного учреждения в России — Грибовской овощной селекционной опытной станции, на базе которой был создан Всероссийский НИИ селекции и семеноводства овощных культур, впоследствии реорганизованный в Федеральный научный центр овощеводства (ФГБНУ ФНЦО). Деятельность центра берет начало с 1920 года, когда под руководством профессора С.И. Жегалова на Грибовской опытной станции была заложена теоретическая и практическая база для развития отечественной селекции. В последующие годы значительное внимание ученых было уделено разработке и совершенствованию методов селекции, повышающих эффективность отбора, а также ускорению селекционного процесса по созданию адресных сортов и гибридов. Применительно к основным овощным культурам разработаны методы межвидовой гибридизации (Н.И. Тимин с соавт., 2013; А.Ф. Агафонов с соавт., 2018), молекулярного маркирования (Т.П. Супрунова с соавт., 2011; Е.А. Домблидес с соавт, 2015), клонального микроразмножения и получения удвоенных гаплоидов, успешно использованные в селекции (М.С. Бунин с соавт., 2004). Предложены базовые протоколы культуры микроспор in vitro для большинства капустных культур (Е.А. Домблидес с соавт., 2016), культуры неопыленных семяпочек — для тыквенных культур (Н.А. Шмыкова с соавт., 2015). Разработана технология получения удвоенных гаплоидов моркови столовой в культурах пыльников, неопыленных семяпочек и микроспор in vitro (Т.С. Вюртц с соавт., 2016). Доказана экономическая выгода использования современных биотехнологических методов in vitro при создании гибридов: сроки создания гибридов сокращаются с 12 до 6 лет, финансовые затраты снижаются в 2 раза (A. Mineikina с соавт., 2019; T. Vurtz с соавт., 2019). Показано ухудшение фитопатологической обстановки и расширение ареалов новых вредоносных возбудителей на овощных культурах. На основе иммунологической, молекулярно-генетической, морфофизиологической оценки селекционного материала овощных культур в условиях искусственного заражения, провокационного и естественного инфекционных фонов выделены источники резистентности к экономически значимым болезням: капусты — к киле, свеклы столовой — к церкоспорозу, фасоли овощной — к вирусным болезням, лука — к пероноспорозу (И.А. Енгалычева с соавт., 2019). При создании сортов с высоким содержанием биологически активных веществ и антиоксидантов широко применяются физиологические и биохимические методы. С использованием созданных сортов овощебахчевых культур разработаны технологии получения функциональных продуктов питания, включая новые виды чая лечебно-профилактического действия, безалкогольные напитки, пищевые красители, и кондитерские изделия (М.С. Гинс с соавт., 2017). Предложены рецептуры безглютеновых хлебобулочных изделий с применением интродуцированных культур якона, амаранта и дайкона. Разработаны технологии обогащения селеном овощных культур для употребления в свежем виде и в качестве сырья для функциональных продуктов (Н.А. Голубкина с соавт., 2018). ФНЦО осуществляет координацию научных исследований по селекции, производству и переработке овощных и бахчевых культур в России в рамках государственных программ по развитию отрасли и обеспечению продовольственной безопасности.

Ключевые слова: история, юбилей, научные исследования, сорта, овощные культуры, селекция, биотехнология, иммунитет, молекулярное маркирование, биохимия, функциональные продукты.

Вековая история Федерального научного центра овощеводства (ФГБНУ ФНЦО) начиналась с Грибовской овощной опытной станции, организованной 1 марта 1920 года по инициативе Наркомзема для государственного производства семян огородных растений и устранения дефицита, сложившегося от ввода санкций ряда зарубежных стран. К 1920 году российский Каталог районированных сортов сельскохозяйственных растений включал 70 сортов овощных культур, из которых за иностранными компаниями было зарегистрировано 50, что и побудило приступить к решению проблемы и создать питомник сортов огородных растений. К 1970 году ученые Грибовской овощной опытной станции создали и передали в производство 240 сортов овощных и бахчевых культур. В Эрфурте (Германия) в 1961 и 1969 годах грибовские сорта получили 18 золотых, 13 серебряных и две бронзовые медали, 11 сортов белокочанной капусты (автор Е.М. Попова) удостоились Гран-при. Решением Государственного комитета Совета Министров СССР по науке и технике от 28 октября 1970 года и приказом Министерства сельского хозяйства СССР от 23 ноября 1970 года № 377 Грибовская овощная опытная станция была преобразована во Всесоюзный НИИ селекции и семеноводства овощных культур (ВНИИССОК), который стал методическим центром в этих фундаментальных и прикладных исследованиях в этой области, при этом особое внимание уделялось организации семеноводства и выращиванию высококачественной элиты. В 2017 году после присоединения к ВНИИССОК восьми филиалов был создан Федеральный научный центр овощеводства как координатор консолидированных научных исследований по селекции, производству и переработке овощных и бахчевых культур в России в рамках государственных программ по развитию отрасли и обеспечению продовольственной безопасности.

Этапы развития отечественной селекции и семеноводства овощных культур можно проследить по истории Грибовской станции, методам работы, созданию уникальных сортов.

Сначала была поставлена задача по размножению иностранных сортов с целью обеспечить страну семенным материалом, однако в связи с отсутствием исходных образцов или их несоответствием сортовым требованиям возникла необходимость создания новых отечественных сортов овощных культур. На первых этапах были освоены техника и учет хозяйственных и морфологических признаков, изучено варьирование сортовых особенностей, выявлены корреляционные связи. Вскрытие корреляций у капусты белокочанной позволило разработать методику оценки скороспелых сортов посредством определения темпов нарастания кочана; для ускорения селекции тыквенных культур использовали корреляции между скороспелостью и близостью расположения женских цветков к семядольным листьям. Определение характера доминирования признаков у гороха овощного позволило подбирать родительские пары для скрещивания и отбирать желаемые формы с учетом доминирования признаков, предполагаемого расщепления, а также хозяйственной ценности исходных образцов. Применялись разнообразные методы отбора: непрерывный массовый, индивидуальный с использованием метода половинок (тыквенные), семейственный с оценкой по потомству, чистолинейный (бобовые), групповой (пасленовые), негативный (цветочные культуры), клоновый у вегетативно размножаемых культур (эстрагон, ревень), отбор из популяции. Использовались рефрактометры при селекции на повышенное содержание сухого вещества в клеточном соке, штангенциркули для измерения диаметра плодов, весовой метод при определении продуктивности растений. Как и во всем мире, с целью обогащения генофонда культурных растений велись исследования по индуцированному мутагенезу и отдаленной гибридизации (1).

Первые межвидовые гибриды лука получили в США в 1930-е годы (2), а в России А.А. Кривенко провел первые скрещивания в 1936 году (1). От скрещивания Allium cepa L. с многолетними видами лука A. altaicum Pall., A. fistulosum L., A. vavilovii Popov & Vved. созданы оригинальные формы межвидовых гибридов с высокой устойчивостью к пероноспорозу. Впервые в селекционно-генетических исследованиях по межвидовой гибридизации в роде Allium L. были получены фертильные гибриды между ди- и тетраплоидными видами: A. cepa L. (×2) × A. nutans L. (×4) и A. cepa L. (×2) × A. schoenoprasum L. (×4) (3). На основе межвидовой гибридизации лука созданы сорта с низким баллом поражения пероноспорозом и высокой урожайностью: Сигма, Золотые Купола, Цепариус (4). В настоящее время исследования по получению и изучению межвидовых гибридов лука продолжаются как в нашей стране, так и за рубежом (5, 6). Мировая практика селекции лука репчатого показывает, что использование видов A. royleiStearn,A. galanthumKar. & Kir., A. vaviloviiPopov & Vved. целесообразно для получения новых форм с устойчивостью к ложной мучнистой росе и шейковой гнили (7), а также для ускорения создания сортов, устойчивых к фузариозу (Fusariumoxysporum f. sp. cepae) (8).

Создание и оценка межвидовых гибридов сопровождается цитогенетическими исследованиями, которые были начаты в 1931 году с целью получения полиплоидных форм капусты и томата (1). Сейчас как в нашей стране, так и за рубежом такие исследования проводятся с привлечением высокоэффективных способов диагностики с помощью флуоресцентной геномной in situ гибридизации (genomic in situ hybridization, GISH; fluorescence in situ hybridization, FISH), что позволяет определить степень близости образцов и предсказать успех работы по отдаленной гибридизации (9, 10).

Кроме отдаленной гибридизации, использовались межсортовые скрещивания. Для селекции тыквенных культур широко применялся подбор пар из географически и экологически отдаленных мест, как, например, при создании сорта огурца Изящный, дыни Грунтовая грибовская 149, арбуза Грибовский длинноплетистый, тыквы Грибовская зимняя (1). Помимо отбора и парных скрещиваний, распространенных на первых этапах селекции, в настоящее время используются сложные ступенчатые беккроссы с акцентом на женский тип цветения и отбор на инфекционном фоне. Широкое распространение в открытом грунте получили сорта и гибриды огурца (Cucumis sativus L.) с групповой устойчивостью к четырем-пяти болезням и адаптивностью к абиотическим факторам внешней среды: Водолей, Электрон 2, Единство, F1 Дебют, F1 Крепыш, F1 Брюнет, F1 Красотка, кустовой сорт Коротышка и др. (11). Созданы уникальные сорта и гибриды тыквы крупноплодной (Cucurbita maxima Duchesne): ультраскороспелый Веснушка; скороспелые с высокими вкусовыми качествами плодов Улыбка, Конфетка, Ольга; среднеспелый урожайный Россиянка; позднеспелые с высоким содержанием сухого вещества и сахаров Премьера, Грибовская зимняя и Москвичка. Три последних сорта создают непрерывный конвейер потребления и даже в условиях Московской области могут быть выращены при посеве семян в открытый грунт в конце мая (12).

Новые сложные схемы скрещиваний с участием сортов местной селекции и географически отдаленного иностранного происхождения успешно применялись при селекции бобовых культур. В 1949 году из гибридной популяции гороха овощного (Pisum sativum L.) впервые была отобрана форма с усатым типом листа и создан сорт Усатый 5, послуживший генетическим источником для создания исходного материала и сортов, устойчивых к полеганию. С использованием разработанных методов подбора родительских компонентов получены современные сорта гороха с оптимальным сочетанием элементов продуктивности: зеленосемянные консервного типа использования, отличающиеся высокой урожайностью, верхним расположением бобов и замедленным переходом сахара в крахмал (Совинтер 1, Фрагмент, Изумруд, Дарунок, Викинг, Барин, Корсар); сахарные, без пергаментного слоя в створках боба для употребления в свежем виде (Неистощимый 195, Сахарный 2, Великан) (13). Кроме того, созданы высококачественные сорта фасоли овощной (Phaseolus vulgaris L.) Золушка, Пагода, Лика, Мрия, Антошка, Светлячок и бобов овощных (Vicia faba L. var. major Harz) Русские белые со светлыми семенами, высоким содержанием белка, устойчивые к болезням, пригодные для механизированных технологий возделывания (15).

Еще в 1930-е годы перед селекционерами была поставлена задача создать сорта лука репчатого для однолетней культуры (получение лука-репки посредством посева семян в грунт). Такое направление селекции актуально и сейчас: для выращивания лука-репки из семян созданы высокоурожайные сорта, способные формировать урожай товарных луковиц не только в южных районах, но и в Нечерноземной зоне России. К ним можно отнести Черный принц, Глобус, Золотничок, Золотые купола, Колобок, Патрыда, Вермелес (16). Интенсивно ведется работа по созданию гетерозисных гибридов на основе цитоплазматической мужской стерильности (ЦМС). С использованием стерильных линий создан ряд гетерозисных гибридов, в том числе F1 Визит, обладающий высокой товарностью, вызреваемостью, урожайностью луковиц, устойчивостью к заболеваниям (17).

С помощью метода гибридизации у капустных культур получены сорта-космополиты Июньская 3200, Подарок 2500, Зимняя грибовская 2176, Слава Грибовская 231, Слава 1305, Номер первый Грибовский 147, Стахановка 1315, Амагер 611 (1). Практически весь сортимент сортов капусты белокочанной Brassica oleracea L. convar. capitata (L.) Alef.var. alba DC. селекции Грибовской станции и Всероссийского НИИ селекции и семеноводства овощных культур (ВНИИССОК), районированный более полувека назад, служит уникальным генофондом при создании новых гетерозисных гибридов и сортов. Так, получены гетерозисные гибриды F1 Аврора, F1 Снежинка, F1 Зарница, F1 Мечта, F1 Северянка, на основе которых создан конвейер поступления свежей продукции потребителям (18).

На заре становления селекции столовых корнеплодов основным методом гибридизации было свободное опыление. С помощью поликросс-переопыления группы образцов выведены сорта свеклы столовой (Beta vulgaris L. ssp. vulgaris var. conditiva Alef.) Бордо 237, моркови (Daucus carota L.) Нантская 4, редиса (Raphanus sativus L. var. sativus) Тепличный Грибовский и Софит (1). Методом парных скрещиваний (разновидность свободного переопыления двух родителей, прямое и обратное) был получен сорт моркови Московская зимняя А-515. Внутрисемейственное скрещивание и скрещивание внутри групп использовались для получения раздельноплодных форм свеклы столовой (Бордо односемянная, Любава, Гаспадыня). В последние годы основными методами при создании линий стали инбридинг, беккросс и кроссбридинг. Метод сибсовых скрещиваний используется для преодоления инбредной депрессии (19).

Со временем требования к создаваемым сортам изменились. Появилась необходимость получения сортов и гибридов с модифицированными биологическими свойствами. Предметом изучения стали биохимические показатели и динамика химического состава: углеводов в зеленом горошке, белка в фасоли овощной, аскорбиновой кислоты у щавеля крупнолистного Rumex acetosa L., кресс-салата Lepidium sativum L., в листьях брюссельской Brassica oleracea L. var. gemmifera Zenker и савойской капусты Brassica oleracea L. convar. capitata (L.) Alef. var. sabauda L. (20). В условиях неблагоприятных техногенных воздействий это направление особенно востребовано, поскольку овощи рассматриваются как необходимый продукт для нормальной жизнедеятельности человека. В последние годы в Японии и странах ЕС получили распространение так называемые функциональные продукты питания. К ним относятся продукты, которые содержат компоненты, позитивно воздействующие на физиологические функции человека (21-23).

Мировой рынок функциональных продуктов интенсивно развивается, ежегодно увеличиваясь на 15-20 %, что отражает современный тренд — стремление населения к полезному и сбалансированному питанию. Лидером на рынке функциональных продуктов питания остается Япония, которая производит около 40 % мирового объема этой категории продукции, на втором месте находятся США (чуть более 30 %), на долю европейских стран приходится менее 30 % (24, 25). На создание функциональных пищевых продуктов ориентировано такое актуальное направление селекции растений, как получение сортов с повышенным содержанием каротиноидов, флавоноидов и других биологически активных компонентов (26-28).

В России также успешно ведется селекционная работа на высокое содержание биологически активных соединений, в том числе на антиоксидантную активность и повышенное количество микронутриентов. Необходимое качество продукции достигается посредством регулярной оценки биохимических показателей на всех этапах селекционного процесса (29). Итогом этих исследований стали функциональные продукты для повышения иммунитета и увеличения продолжительности жизни человека. С использованием созданных сортов овощебахчевых культур разработаны технологии производства новых видов чая лечебно-профилактического действия, безалкогольных напитков, пищевых красителей и кондитерских изделий, в том числе для диабетиков. Созданы рецептуры безглютеновых хлебобулочных изделий с применением интродуцированных культур якона, амаранта и дайкона (30). Разработаны технологии обогащения селеном овощных культур для употребления в свежем виде и использования как сырья для функциональных продуктов (31-34).

Исследования по иммунитету и защите растений всегда были приоритетной и необходимой составляющей научной работы. Они начинались с изучения наиболее вредоносных патогенов и решения методических вопросов по оценке и отбору растений на устойчивость (1). Сейчас это направление приобретает особую актуальность. В мире ежегодно теряются миллионы тонн ценной для населения овощной продукции в результате эпифитотийных ситуаций, создаваемых фитопатогенами различной этиологии (35). Мониторинг патогенного комплекса на сельскохозяйственных культурах в течение последних 10-15 лет свидетельствует о расширении ареалов новых вредоносных возбудителей, изменении численности популяций фитопатогенов, характера и размеров занимаемых ими экологических ниш, смене доминирующих видов в сообществах, повышении вирулентности и агрессивности ранее малопатогенных групп организмов (36, 37).

Причины таких популяционных сдвигов во многом связаны с экологическими факторами, которые влияют на взаимоотношения в системе патоген—растение (38, 39). На корнеплодах моркови столовой в период хранения нами впервые были обнаружены грибные патогены Sclerotinia nivalis, Gleocladium roseum, Trichotecium roseum, Chaetomium spp., Typhula ishikariensis. Отмечено нарастание распространенности и агрессивности бактерии Pectobacterium carotovora. В последние годы в Московской области на овощных культурах расширился видовой состав микромицетов рода Fusarium — возбудителей фузариозных гнилей и увядания, многие из которых относятся к теплолюбивым видам и ранее не встречались в указанном регионе. На культуре чеснока озимого выделены и идентифицированы виды F. oxysporum, F. avenacium, F. nivale, F. chlamidosporum, F. solani, F. culmorum, F. semitectum; на культуре моркови столовой — F. chlamido-sporum, F. equiseti, F. proliferatum (40). На луке обнаружен и идентифицирован новый для Центрального региона России патоген Aspergillus niger, вызывающий черную плесень к концу вегетации и в период хранения (41, 42). На корнеплодах свеклы столовой выделены Typhula ishikariensis, на семенах редиса — Drechslera Бондарцева (43).

Основные причины возникающих эпифитотий фитовирусов — появление новых, более агрессивных штаммов, возделывание сортов со слабой устойчивостью, неконтролируемая торговля посадочным и семенным материалом, появление новых видов векторов-переносчиков и недостаточные меры борьбы с ними (44, 45). В последние годы на овощных культурах отмечается нарастание вредоносности фитовирусов, проявляющееся в снижении продуктивности и качества возделываемых культур. Поэтому идентификация и изучение вирусов и болезней, вызываемых ими на овощных культурах, остаются актуальными направлениями в современных иммунологических исследованиях.

На культуре салата (Lactuca sativa L.) идентифицированы вредоносные заболевания, вызываемые вирусом мозаики салата (Lettuce mosaic virus, LMV, Potyvirus, Potyviridae) и вирусом аспермии томата (Tomato aspermy virus, AsTV, Cucumovirus, Bromoviridae) (46). На культурах семейства Fabaceae(фасоль, бобы, горошек душистый) в условиях Московского региона наибольшей вредоносностью обладают вирус обыкновенной мозаики фасоли (Bean common mosaic virus, BCMV, Potyvirus, Potyviridae), вирус желтой мозаики фасоли(Bean yellow mosaic virus,BYMV, Potyvirus, Potyviridae), вирус обыкновенной мозаики гороха (Pea mosaic virus,PMV, Potyvirus, Potyviridae) (47). С помощью методов иммунодиагностики идентифицированы наиболее вредоносные и экономически значимые фитовирусы, поражающие культуры семейства Solanaceae (перец сладкий и томат): вирус табачной мозаики (Tobacco mosaic virus, TMV, Tobamovirus, Virgaviridae), вирус бронзовости томата (Tomato spotted wilt virus, TSWV, Tospovirus, Bunyaviridae), вирус огуречной мозаики (Cucumber mosaic virus, CMV, Cucumovirus, Bromoviridae), Х-вирус картофеля (Potato virus X, PVX, Potexvirus, Alphaflexiviridae), Y-вирус картофеля (Potato virus Y, PVY, Potyvirus, Potyviridae), вирус мозаики люцерны (Alfalfa mosaic virus, AMV, Alfamovirus, Bromoviridae) (48, 49). Для выделения форм, устойчивых к заболеваниям, разрабатываются и непрерывно модифицируются методы оценки и отбора в зависимости от биологических особенностей растений-хозяев и фитопатогенов в рамках целевой селекции. Особое влияние уделяется разработке экспресс-методов на ранних стадиях развития растения (семя, проросток, сеянец) с использованием этиолированных и фотосинтезирующих проростков, что позволяет провести скрининг широкого генетически разнообразного материала (40, 50, 51). Предложен методический подход к оценке устойчивости капусты белокочанной к Xanthomonas campestris pv. campestris с использованием этиолированных и фотосинтезирующих проростков и изучены особенности влияния этого патогена на ростовые процессы в зависимости от расового состава возбудителя, степени устойчивости сорта (52).

На основе иммунологической, молекулярно-генетической, морфофизиологической оценки коллекционного и селекционного материала овощных культур в условиях искусственного заражения, провокационного и естественного инфекционного фонов выделены источники резистентности овощных культур к экономически значимым болезням: капусты — к киле (53), свеклы столовой — церкоспорозу (54), фасоли овощной — к вирусным болезням (47), лука — к пероноспорозу (4).

Обширная опытная сеть и размещение опорных пунктов института в разнообразных природных зонах (Россия, Украина, Туркмения, Узбекистан, Азербайджан) позволяли организовать выращивание высококачественной элиты в различных почвенно-климатических условиях. С 1970-х годов экологические исследования были направлены на повышение роли сорта в системе генотип—среда, что стало основной получения пластичных сортов с высокой адаптивной способностью (55). Получили развитие механизированные технологии производства семян и методы малой механизации, разрабатывались приемы экономической оценки в семеноводстве и селекционном процессе. Расширился набор культур, селекционную работу стали проводить по зеленным, пряно-вкусовым и малораспространенным культурам (всего 110 наименований).

На современном этапе развития селекции наиболее важны расширение спектра генетических ресурсов и усиление формообразовательного процесса для получения принципиально нового исходного материала. В ФГБНУ ФНЦО создана богатейшая признаковая коллекция, насчитывающая более 16 тыс. образцов по 120 культурам. В 2017 году она зарегистрирована как УНУ (уникальная научная установка) «Генетическая коллекция растительных ресурсов ВНИИССОК». В коллекцию входят сорта овощных, бахчевых и цветочных культур, селекционные формы, используемые как генетические источники и доноры селекционно ценных признаков, а также сорта народной селекции.

Для ускорения селекционного процесса немаловажное значение имеет разработка и применение инновационных методов. С конца 1980-х годов в институте активно применяются технологии культивирования тканей и клеток in vitro. Первые исследования были направлены на получение безвирусного посадочного материала чеснока в меристемной культуре. Продолжателем этого направления стал А.В. Поляков с коллегами, которые установили, что использование воздушных луковичек, изолированных из нераскрывшихся соцветий диаметром до 25 мм, для введения чеснока озимого в культуру in vitro дает возможность получить свободные от внутренней инфекции растения (56). В дальнейшем была разработана технология клонального микроразмножения капусты белокочанной, позволяющая получать растения с мужской стерильностью в неограниченных количествах (57). Разработанная технология клонального микроразмножения баклажана (Solanum melongena L.) и перца (Capsicum annuum L.) (58) легла в основу эмбриокультуры по спасению зародышей при межвидовой гибридизации (59).

С момента обнаружения первых гаплоидов в 1922 году (60) многие генетики и селекционеры растений заинтересовались этим открытием для получения гомозиготных линий. На сегодняшний день в мировой практике с применением гаплоидной биотехнологии создано почти 300 сортов сельскохозяйственных культур. Список видов, у которых получены гаплоиды и удвоенные гаплоиды, постоянно пополняется, появляются новые обзорные публикации, посвященные гаплоидии, проводятся генетические и фундаментальные исследования на DH-линиях, создаются новые сорта и гибриды на основе линий удвоенных гаплоидов, в том числе овощных культур (61-65). Методы гаплоидии во ВНИИССОК на растениях моркови и капусты белокочанной начали развиваться в 1990-е годы. Были получены удвоенные гаплоидные растения моркови сортообразцов различного происхождения — НИИОХ 336, Витаминная, Московская зимняя А-515, Лосиноостровская 13, Леандр, Шантанэ 2461, Напе, Рондо, гибриды F1 Каратан, F1 Калисто (66).

Разработанные инновационные биотехнологии позволяют существенно ускорить селекционный процесс для большинства овощных культур. Базовый протокол технологии получения удвоенных гаплоидов с помощью культуры изолированных микроспор, разработанный в начале 1980-х годов (67) для рапса, адаптирован для представителей рода Brassica (68, 69). Он успешно используется в разных странах, много сообщений по указанной тематике публикуют ученые из Индии (70), Канады (71), Чехии (72). В ФГБНУ ФНЦО разработан базовый протокол культуры микроспор in vitro для капустных культур (73) и получены удвоенные гаплоиды, в том числе капусты белокочанной (74, 75), капусты брокколи Brassica oleracea L. convar. botrytis (L.) Alef. var. cymosa Duch. (76, 77), репы (78), капусты пурпурной Brassica rapa L. ssp. chinensis (L.)Hanelt var. purpuraria (L.H. Bailey) Hanelt (79), горчицы сарептской Brassica juncea (L.) Czern., индау посевного Eruca sativa Mil. (80) и даже самой малоотзывчивой в этом семействе культуры — редиса европейского (81).

Исследования по получению удвоенных гаплоидов моркови в мире ведутся давно, но первые успехи достигнуты в последнее время. Еще в 1995 году впервые сообщалось об образовании многоядерных структур в культуре изолированных микроспор моркови, однако получить растения не удалось (82). Имеются публикации об использовании этого подхода польскими (83) и китайскими (84) учеными. В ФГБНУ ФНЦО разработана технология получения удвоенных гаплоидов моркови столовой в культуре пыльников, неопыленных семяпочек и микроспор in vitro и получены удвоенные гаплоиды из 8 различных сортообразцов (85). Расчет стоимости создания чистых линий капусты белокочанной (86) и моркови столовой (87) доказал экономическую выгоду от применения метода культуры изолированных микроспор in vitro при создании гибридов. При этом сроки производства гибридов сокращаются с 12 до 6 лет, а финансовые затраты снижаются в 2 раза.

Проводятся работы по оптимизации методик получения удвоенных гаплоидов в культуре неопыленных семяпочек для тыквенных культур, получены DH-растения тыквы крупноплодной (88). Значительные успехи достигнуты в создании гомозиготных линий кабачка (89) и огурца (90). Базовый протокол технологии получения удвоенных гаплоидов в культуре неопыленных семяпочек in vitro для тыквенных культур, разработанный еще во второй половине XX века, впервые запатентован только в 2017 году (91). Со временем его адаптировали для различных представителей семейства Cucurbitaceae (92, 93), в частности для важнейших из них — кабачка (Cucurbita pepo L.), тыквы крупноплодной и твердокорой (94), огурца (95). Однако было показано, что технологии получения удвоенных гаплоидов в культуре неопыленных семяпочек in vitro тыквеных культур, разработанные в ФГБНУ ФНЦО, более эффективны по сравнению с зарубежными аналогами, поскольку число полученных растений-регенерантов с одной завязи было больше, чем указано в зарубежных источниках. Впервые среди потомства DH-линий, полученных в культуре неопыленных семяпочек in vitro, было описано образование уродливых аномальных цветков, представляющих интерес для генетических исследований по детерминации пола у Cucurbita pepo L. (96). Цитологический анализ растений-регенерантов R0 показал, что 7 % были гаплоидами, около 20 % оказались миксоплоидами, а остальные были удвоенными гаплоидами (2n = 2× = 40). Впервые были получены микрофотографии хромосом кабачка C. pepo subsp. brevicaulis var. giraumons Duch и его отдаленного гибрида с твердокорой тыквой C. pepo subsp. pepo var. pepo, а также полученных из них удвоенных гаплоидов (97).

В ФГБНУ ФНЦО разработка систем молекулярного маркирования была начата в 1990-е годы и продолжает активно развиваться (98). В настоящее время молекулярное маркирование служит главным методом при создании гибридов овощных культур на основе ЦМС. Разработана система ДНК-идентификации различных типов стерильной цитоплазмы у капустных культур, позволяющая определять все типы цитоплазмы, где найден новый аллельный вариант локуса orf138, отвечающего за проявление стерильной цитоплазмы типа Ogura у образцов капусты белокочанной (99).

Идентифицированы митохондриальные гены coxII и atp6, отвечающие за признак ЦМС, у образцов перца сладкого и межвидовых гибридов Capsicum frutescens и C. сhinense, что позволяет определить образцы со стерильной и фертильной цитоплазмой (100). Выявлены образцы лука репчатого с митохондриальными генами orfА501 и cob и определен тип стерильной цитоплазмы (S- или T-плазмотип) (101). В дальнейшем были использованы дополнительные маркеры для гена цитоплазмы orf725 и ядерных генов с целью более полной оценки исходного материала лука репчатого, что позволило выявить необходимые селекционные образцы для получения гибридов (102).

С использованием современных методов селекции созданы гетерозисные гибриды перца F1 Натали, F1 Гусар (100), капусты белокочанной среднепозднего срока созревания F1 Натали (74), тыквы крупноплодной F1 Вега (103), капусты брокколи F1 Спарта (104).

Таким образом, селекция овощных культур в России прошла несколько этапов: интродукция, применение различных способов отбора среди местных и иностранных популяций, получение новых сортов посредством скрещивания видов и родов, использование методов биотехнологии и молекулярного маркирования для быстрого достижения конечного результата. Спустя век после основания Федеральный научный центр овощеводства остается одним из ведущих отраслевых научных учреждений Российской Федерации, в котором создаются сорта и гибриды овощных культур для открытого и защищенного грунта, гидропонных и аэропонных установок в комплексе с технологиями возделывания, системами удобрений и защиты растений в соответствии с мировыми тенденциями современного овощеводства, разрабатываются инновационные решения для получения функциональных продуктов питания. Федеральный научный центр овощеводства осуществляет координацию научных исследований по селекции, производству и переработке овощных и бахчевых культур в России в рамках государственных программ по развитию отрасли и обеспечению продовольственной безопасности.

ЛИТЕРАТУРА

1. Селекция и семеноводство овощных культур на Грибовской опытной станции за 50 лет /Под ред. З.В. Купцовой. М., 1970.
2. Emsweller S.L., Jones H.A. An interspecific hybrid in Allium L. Hitgardis,1935, 5(9): 265-273.
3. Тимин Н.И., Пышная О.Н., Агафонов А.Ф., Мамедов М.И., Титова И.В., Кан Л.Ю., Логунова В.В., Романов В.С., Шмыкова Н.А., Тимина Л.Т., Гуркина Л.К., Джос Е.А., Супрунова Т.П., Кривошеев С.М., Енгалычева И.А. Межвидоваягибридизацияовощныхрастений (Allium L. — лук, Daucus L. — морковь, Capsicum L. — перец) /Под ред. В.Ф. Пивоварова. М., 2013.
4. Агафонов А.Ф., Логунова В.В., Гуркина Л.К. Межвидовые гибриды лука с высокой степенью устойчивости к пероноспорозу и высоким содержанием сухого вещества. ОвощиРоссии, 2018, 4(42): 3-5 (doi: 10.18619/2072-9146-2018-4-3-5).
5. Umehara M., Sueyoshi T., Shimomura K., Iwai M., Shigyo M., Hirashima K., Nakahara T. Interspecific hybrids between Allium fistulosum and Allium schoenoprasum reveal carotene-rich phenotype. Euphytica, 2006, 148(3): 295-301 (doi: 10.1007/s10681-005-9029-8).
6. Hirschegger P., Jakše J., Trontelj P., Bohanec B. Origins of Allium ampeloprasum horticultural groups and a molecular phylogeny of the section Allium (Allium: Alliaceae). Molecular Phylogenetics and Evolution, 2010, 54(2): 488-497 (doi: 10.1016/j.ympev.2009.08.030).
7. Scholten O.E., van Kaauwen M.P.W., Shahin A., Hendrickx P.M., Keizer L.C.P., Burger K., van Heusden A.W., van der Linden C.G., Vosman B. SNP-markers in Allium species to facilitate introgression breeding in onion. BMC Plant Biology, 2016, 16(1): 187-196 (doi: 10.1186/s12870-016-0879-0 ).
8. Ariyanti N.A., Hoa V.Q., Khrustaleva L.I., Hirata S., Abdelrahman M., Ito S., Yamauchi N., Shigyo M. Production and characterization of alien chromosome addition lines in Allium fistulosum carrying extra chromosomes of Allium roylei using molecular and cytogenetic analyses. Euphytica, 2015, 206(2): 343-355 (doi: 10.1007/s10681-015-1476-2).
9. Кан Л.Ю. Цитологический анализ селекционно-генетического материала рода Daucus L. Мат. Межд. науч.-практ. конф., посвященной 131-ой годовщине со дня рождения академика Н.И. Вавилова «Вавиловские чтения — 2018». М., 2018: 59-63.
10. Suzuki G., Ogaki Y., Hokimoto N., Xiao L., Kikuchi-Taura A., Harada C., Okayama R., Tsuru A., Onishi M., Saito N., Do G.S., Lee S.H., Ito T., Kanno A., Yamamoto M., Mukai Y. Random BAC FISH of monocot plants reveals differential distribution of repetitive DNA elements in small and large chromosome species. Plant Cell Rep., 2012, 31(4): 621-628 (doi: 10.1007/s00299-011-1178-8).
11. Коротцева И.Б. Направления работы и основные достижения лаборатории селекции и семеноводства тыквенных культур ВНИИССОК. Овощи России, 2015, 3(28): 54-57 (doi: 10.18619/2072-9146-2015-3-4-54-57).
12. Химич Г.А., Коротцева И.Б., Гинс М.С., Гинс В.К., Байков А.А. Тыквы селекции ВНИИССОК. Новые и нетрадиционные растения и перспективы их использования, 2016, 12: 271-273.
13. Котляр И.П., Ушаков В.А., Кайгородова И.М., Пронина Е.П. Селекция гороха овощного на технологичность. Овощи России, 2019, 2(46): 34-38 (doi: 10.18619/2072-9146-2019-2-34-38).
14. Пивоваров В.Ф., Пронина Е.П. Основные направления и результаты селекции и семеноводства овощных бобовых культур во ВНИИССОК. Овощи России, 2013, 1(18): 4-11 (doi: 10.18619/2072-9146-2013-1-4-11).
15. Пронина Е.П., Ушаков В.А., Котляр И.П., Солдатенко А.В. Русские белые — новый урожайный перспективный сорт бобов овощных (Vicia faba L.). Овощи России, 2019, 6: 50-52 (doi: 10.18619/2072-9146-2019-6-50-52).
16. Шиманский Л.П., Копылович В.Л., Сикорский А.В., Сирота С.М., Агафонов А.Ф., Пронина Е.П. Основные итоги Российско-Белорусского сотрудничества по селекции овощных бобовых и луковых культур. Овощи России, 2014, 4(25): 23-27 (doi: 10.18619/2072-9146-2014-4-23-27).
17. Логунова В.В., Кривенков Л.В., Гуркина Л.К., Гращенкова Н.Н. Селекция лука репчатого на гетерозис. Известия ФНЦО, 2019, 2: 45-49 (doi: 10.18619/2658-4832-2019-2-45-49).
18. Бондарева Л.Л. Конвейер гибридов капусты белокочанной селекции ВНИИССОК на овощном рынке России. Овощи России, 2017, 1(34): 22-23 (doi: 10.18619/2072-9146-2017-1-22-23).
19. Федорова М.И., Степанов В.А. Корнеплодные овощные растения, направления селекции, результаты. Овощи России, 2017, 4(37): 16-22 (doi: 10.18619/2072-9146-2017-4-16-22).
20. Гинс М.С., Гинс В.К. Физиолого-биохимические основы интродукции и селекции овощных культур. М., 2011.
21. Hasler C.M., Bloch A.S., Thomson C.A., Enrione E., Manning C. Position of the American dietetic association: functional foods. Journal of the American Dietetic Association, 2004, 104(5): 814-826 (doi: 10.1016/j.jada.2004.03.015).
22. Martirosyan D.M. Functional foods and chronic diseases: science and practice (volume 8). Oxford, 2011.
23. Lewandowska U., Szewczyk K., Hrabec E., Janecka A., Gorlach S. Overview of metabolism and bioavailability enhancement of polyphenols. J. Agric. Food Chem., 2013, 61(50): 12183-12199 (doi: 10.1021/jf404439b).
24. European Commission. Functional foods. Brussels, 2010 (doi: 10.2777/82512).
25. Mudry J. Functional foods, marketing of. In: Encyclopedia of food and agricultural ethics /P.B. Thompson, D.M. Kaplan (eds.). Springer, Dordrecht, 2014 (doi: 10.1007/978-94-007-0929-4_417).
26. Woo K.S., Hwang I.G., Kim T.M., Kim D.J., Hong J.T., Jeon H.S. Changes in the antioxidant activity of onion (Allium cepa) extracts with heat treatment. Food Sci. Biotechnol., 2007, 16(5): 828-831.
27. Ficco D.B.M., de Simone V., Colecchia S.A., Pecorella I., Platani C., Nigro F., Finocchiaro F., Papa R., de Vita P. Genetic variability in anthocyanin composition and nutritional properties of blue, purple, and red bread (Triticum aestivum L.) and durum (Triticum turgidum L. ssp. turgidum convar. durum) wheats. J. Agric. Food Chem., 2014, 62(34): 8686-8695 (doi: 10.1021/jf5003683).
28. Zhang Z., Lei M., Liu R., Gao Y., Xu M., Zhang M. Evaluation of alliin, saccharide contents and antioxidant activities of black garlic during thermal processing. Journal of Food Biochemistry, 2015, 39(1): 39-47 (doi: 10.1111/jfbc.12102).
29. Adzhieva V.F., Babak O.G., Shoeva O.Y., Kilchevsky A.V., Khlestkina E.K. Molecular genetic mechanisms of the development of fruit and seed coloration in plants. Russian Journal of Genetics: Applied Research, 2016, 6(5): 537-552 (doi: 10.1134/S2079059716050026).
30. Гинс М.С., Гинс В.К., Кононков П.Ф. Антиоксидантный метаболом овощных культур. Вестник Российской сельскохозяйственной науки, 2016, 2: 55-58.
31. Гинс М.С., Романова Е.В., Плющиков В.Г., Гинс В.К., Пивоваров В.Ф. Функциональные продукты питания из растительного сырья. М., 2017.
32. Крячко Т.И., Малкина В.Д., Мартиросян В.В., Смирнова С.А., Голубкина Н.А., Бондарева Л.Л. Исследование химического состава порошка из капусты брокколи как сырья для производства функциональных продуктов питания. Известия высших учебных заведений. Пищевая технология, 2019, 1(367): 22-26.
33. Малкина В.Д., Крячко Т.И., Мартиросян В.В., Голубкина Н.А., Середин Т.М., Павлов Л.В. Применение порошка лука-порея — аккумулятора селена для обогащения хлебобулочных изделий. Кондитерское и хлебопекарное производство, 2019, 3-4(180): 31-35.
34. Голубкина Н.А., Середин Т.М., Кошеваров А.А., Шило Л.М., Баранова Е.В., Павлов Л.В. Порошок чеснока, обогащенного селеном. Микроэлементывмедицине, 2018, 19(1): 43-50 (doi: 10.19112/2413-6174-2018-19-1-43-50).
35. Pethybridge S.J., Kikker J.R., Hanson L.E., Nelson S.C. Challenges and prospects for building resilient disease management strategies and tactics for the New York table beet industry. Agronomy, 2018, 8(7): 112 (doi: 10.3390/agronomy8070112).
36. West J.S., Townsend J.A., Stevens M., Fitt B.D.L. Comparative biology of different plant pathogens to estimate effects of climate change on crop diseases in Europe. European Journal of Plant Pathology, 2012, 133(1): 315-331 (doi: 10.1007/s10658-011-9932-x).
37. Санин С.С. Фитосанитарные вызовы современного интенсивного растениеводства. В сб.: Плодоводство и ягодоводство России. М., 2015, вып. 43: 178-183.
38. Velasquez A.C., Castroverde C.D.M., He S.Y.  Plant—pathogen warfare under changing climate conditions. Current Biology, 2018, 28(10): R619-R634 (doi: 10.1016/j.cub.2018.03.054).
39. Рябушкина Н.А. Биотесты для скрининга аллелопатического потенциала диких и культурных видов растений. Биотехнология. Теория и практика, 2005, 5: 5-15.
40. Chen J., Shang Y.-T., Wang W.-H. Chen X.-Y., He E.-M., Zheng H.-L., Shangguan Z. Hydrogen sulfide-mediated polyamines and sugar changes are involved in hydrogen sulfide-induced drought tolerance in Spinacia oleracea seedlings. Frontiers in Plant Science, 2016, 7: 1173 (doi: 10.3389/fpls.2016.01173).
41. Тимина Л.Т., Енгалычева И.А. Патогенная микробиота на овощных культурах в условиях Центрального региона РФ. Селекция и семеноводство овощных культур, 2014, 45: 530-539.
42. Агафонов А.Ф., Тимина Л.Т., Шестакова К.С. Вниманию луководов — черная плесень лука. Овощи России, 2012, 3(16): 48-51.
43. Nayuolu M.V. Plant viruses. India, 2007.
44. Makkouk K.M., Kumari S.G. Epidemiology and integrated management of persistently transmitted aphid-borne viruses of legume and cereal crops in West Asia and North Africa. Virus Research, 2009, 141(2): 209-218 (doi: 10.1016/j.virusres.2008.12.007).
45. Hampton R.O., Jensen A., Hagel G.T. Attributes of bean yellow mosaic potyvirus transmission from clover to snap beans by four species of aphids (Homoptera: Aphididae). Journal of Economic Entomology, 2005, 98(6): 1816-1823 (doi: 10.1603/0022-0493-98.6.1816).
46. Енгалычева И.А., Павлова О.В. Межвидовая гибридизация салата (Lactuca sativa L.) в селекции на устойчивость к Tomato aspermy cucumovirus. Вестникзащитырастений, 2016, 3(89): 68-70.
47. Енгалычева И.А., Козарь Е.Г. Основные направления исследований вирусных болезней овощных культур в ФГБНУ ФНЦО (мониторинг, иммунитет, источники устойчивости). Аграрная наука, 2019, S3: 79-85 (doi: 10.32634/0869-8155-2019-326-3-79-85).
48. Almási A., Csilléry G., Csömör Z., Nemes K., Palkovics L., Salánki K., Tóbiás I. Phylogenetic analysis of Tomato spotted wilt virus (TSWV) NSs protein demonstrates the isolated emergence of resistance-breaking strains in pepper. Virus Genes, 2015, 50(1): 71-78 (doi: 10.1007/s11262-014-1131-3).
49. Scholthof K.B.G., Adkins S., Czosnek H., Palukaitis P., Jacquot E., Hohn T., Hohn B., Saunders K., Candresse T., Ahlquist P., Hemenway C., Foster G.D. Top 10 plant viruses in molecular plant pathology. Molecular Plant Pathology, 2011, 12(9): 938-954 (doi: 10.1111/j.1364-3703.2011.00752.x).
50. Yu L., Zhang C., Shang H., Wang X., Wei M., Yang F., Shi Q. Exogenous hydrogen sulfide enhanced antioxidant capacity, amylase activities and salt tolerance of cucumber hypocotyls and radicles. Journal of Integrative Agriculture, 2013, 12(3): 445-456 (doi: 10.1016/S2095-3119(13)60245-2).
51. Janicka M., Reda M., Czyzewska K., Kabała K. Involvement of signalling molecules NO, H2O2 and H2S in modification of plasma membrane proton pump in cucumber roots subjected to salt or low temperature stress. Functional Plant Biology, 2018, 45(4): 428-439 (doi: 10.1071/FP17095).
52. Ушаков А.А., Козарь Е.Г., Енгалычева И.А. Влияние Хanthomonas campestris pv. campestris на рост этиолированных и фотосинтезирующих проростков Вrassica oleracea. Овощи России, 2019, 6: 133-140 (doi: 10.18619/2072-9146-2019-6-133-140).
53. Ушаков А.А., Бондарева Л.Л., Енгалычева И.А. Эффективность иммунологической оценки линий капусты белокочанной к Рlasmodiophora brassicae Wor. на искусственном инфекционном фоне. Овощи России, 2018, 6(44): 97-100 (doi: 10.18619/2072-9146-2018-6-97-100).
54. Козарь Е.Г., Ветрова С.А., Енгалычева И.А., Федорова М.И. Оценка устойчивости селекционного материала свеклы столовой к церкоспорозу на фоне эпифитотии в условиях защищенного грунта Московской области. Овощи России, 2019, 6: 124-132 (doi: 10.18619/2072-9146-2019-6-124-132).
55. Пивоваров В.Ф., Добруцкая Е.Г. Экологические основы селекции и семеноводства овощных культур. М., 2000.
56. Поляков А.В., Азопкова М.А., Лебедева Н.Н., Муравьёва И.В. In vitro регенерация растений чеснока озимого (Alliumsativum L.) из воздушных луковичек. Вестник Московского государственного областного университета. Серия: естественные науки, 2018, 4: 115-124 (doi: 10.18384/2310-7189-2018-4-115-124).
57. Бунин М.С., Шмыкова Н.А. Использование биотехнологических методов для получения исходного селекционного материала капусты. М., 2004.
58. Верба В.М., Мамедов М.И., Пышная О.Н., Шмыкова Н.А. Клональное микроразмножение баклажана путем органогенеза. Вестник РАСХН, 2010, 6: 57-59.
59. Верба В.М., Мамедов М.И., Пышная О.Н., Супрунова Т.П., Шмыкова Н.А. Получение межвидовых гибридов баклажана методом эмбриокультуры. Сельскохозяйственнаябиология, 2010, 45(5): 66-71.
60. Blakeslee A.F., Belling J., Farnham M.E., Bergner A.D. A haploid mutant in the jimson weed, «Datura stramonium». Science, 1922, 55(1433): 646-647 (doi: 10.1126/science.55.1433.646).
61. Maluszynski M., Kasha K.J., Szarejko I. Published doubled haploid protocols in plant species. In: Doubled haploid production in crop plants /M. Maluszynski, K.J. Kasha, B.P. Forster, I. Szarejko (eds.). Springer, Dordrecht, 2003: 309-335 (doi: 10.1007/978-94-017-1293-4_46).
62. Forster B.P., Heberle-Bors E., Kasha K.J., Touraev A. The resurgence of haploids in higher plants. Trends in Plant Science, 2007, 12(8): 368-375 (doi: 10.1016/j.tplants.2007.06.007).
63. Advances in haploid production in higher plants /A. Touraev, B.P. Forster, S.M. Jain (eds.). Netherlands, 2009 (doi: 10.1007/978-1-4020-8854-4).
64. Dunwell J.M. Haploids in flowering plants: origins and exploitation. Plant Biotechnology Journal, 2010, 8(4): 377-424 (doi: 10.1111/j.1467-7652.2009.00498.x).
65. Germanà M.A. Gametic embryogenesis and haploid technology as valuable support to plant breeding. Plant Cell Reports, 2011, 30(5): 839-857 (doi: 10.1007/s00299-011-1061-7).
66. Тюкавин Г.Б. Основы биотехнологии моркови. М., 2007.
67. Lichter R. Induction of haploid plants from isolated pollen of Brassica napus. Zeitschrift fur Pflanzenphysiologie, 1982, 105(5): 427-434 (doi: 10.1016/S0044-328X(82)80040-8).
68. Pechan P.M., Keller W.A. Identification of potentially embryogenic microspores in Brassica napus. Physiologia Plantarum, 2006, 74(2): 377-384 (doi: 10.1111/j.1399-3054.1988.tb00646.x).
69. Seo M., Sohn S., Park B., Ko H., Jin M. Efficiency of microspore embryogenesis in Brassica rapa using different genotypes and culture conditions. Journal of Plant Biotechnology, 2014, 41(3): 116-122 (doi: 10.5010/JPB.2014.41.3.116).
70. Reeta B., Dey S.S., Parkash C., Sharma K., Sood S., Kumar R. Modification of important factors for efficient microspore embryogenesis and doubled haploid production in field grown white cabbage (Brassica oleracea var. capitata L.) genotypes in India. Scientia Horticulturae, 2018, 233: 178-187 (doi: 10.1016/j.scienta.2018.01.017).
71. Ferrie A.M.R. Microspore culture of Brassica species. In: Doubled haploid production in crop plants /M. Maluszynski, K.J. Kasha, B.P. Forster, I. Szarejko (eds.). Springer, Dordrecht, 2003: 205-215 (doi: 10.1007/978-94-017-1293-4_31).
72. Smýkalová I., Větrovcová M., Klíma M., Macháčková M., Griga M. Efficiency of microspore culture for doubled haploid production in the breeding project «Czech Winter Rape». Czech Journal of Genetics and Plant Breeding, 2006, 42(2): 58-71 (doi: 10.17221/3655-CJGPB).
73. Домблидес Е.А., Шмыкова Н.А., Шумилина Д.В., Заячковская Т.В., Минейкина А.И., Козарь Е.В., Ахраменко В.А., Шевченко Л.Л., Кан Л.Ю., Бондарева Л.Л., Домблидес А.С. Технология получения удвоенных гаплоидов в культуре микроспор семейства капустные: методические рекомендации. М., 2016.
74. Пивоваров В.Ф., Бондарева Л.Л., Шмыкова Н.А., Шумилина Д.В., Минейкина А.И. Создание гибридов капусты белокочанной (Brassica oleracea L. convar. capitata var. alba DC) нового поколения с использованием линий удвоенных гаплоидов. Сельскохозяйственная биология, 2017, 1(52): 143-151 (doi: 10.15389/agrobiology.2017.1.143rus).
75. Коротцева К.С., Домблидес Е.А., Домблидес А.С. Совершенствование технологии получения удвоенных гаплоидов капусты белокочанной в культуре микроспор in vitro. Мат. конф. «Биотехнология в растениеводстве, животноводстве и сельскохозяйственной микробиологии». М., 2019, 17-19.
76. Домблидес Е.А., Козарь Е.В., Шумилина Д.В., Заячковская Т.В., Ахраменко В.А., Солдатенко А.В. Эмбриогенез в культуре микроспор брокколи. Овощи России, 2018, 1(39): 3-7 (doi: 10.18619/2072-9146-2018-1-3-7).
77. Заблоцкая Е.А., Бондарева Л.Л., Сирота С.М. Корреляционные связи между некоторыми хозяйственно ценными признаками у капусты брокколи. Овощи России, 2018, 1(39): 8-11 (doi: 10.18619/2072-9146-2018-1-8-11).
78. Shumilina D., Kornyukhin D., Domblides E., Soldatenko A., Artemyeva A. Impact of genotype and culture conditions on microspore embryogenesis and plant regeneration in Brassica rapa L. ssp. rapa. Plants, 2020, 9(2): 278 (doi: 10.3390/plants9020278).
79. Козарь Е.В., Коротцева К.С., Романова О.В., Чичварина О.А., Кан Л.Ю., Ахраменко В.А., Домблидес Е.А. Получение удвоенных гаплоидов Brassica purpuraria. Овощи России, 2019, 6: 3-7 (doi: 10.18619/2072-9146-2019-6-10-18).
80. Домблидес Е.А., Чичварина О.А., Минейкина А.И., Курбаков Е.Л., Харченко В.А., Домблидес А.С., Солдатенко А.В. Ускоренное создание гомозиготных линий листовых культур семейства Brassicaceae Burnett в культуре микроспор in vitro. Овощи России, 2019, 4: 8-12 (doi: 10.18619/2072-9146-2019-4-8-12).
81. Козарь Е.В., Домблидес Е.А., Солдатенко А.В. Факторы, влияющие на получение DH- растений в культуре микроспор in vitro редиса европейского. Вавиловский журнал генетики и селекции, 2020, 24(1): 31-39 (doi: 10.18699/VJ20.592).
82. Matsubara S., Dohya N., Murakami K. Callus formation and regeneration of adventitious embryos from carrot, fennel and mitsuba microspores by anther and isolated microspore cultures. Acta Horticulturae, 1995, 392: 129-138 (doi: 10.17660/ActaHortic.1995.392.15).
83. Kiszczak W., Kowalska U., Kapuścińska A., Burian M., Górecka K. Comparison of methods for obtaining doubled haploids of carrot. Acta Societatis Botanicorum Poloniae, 2017, 86(2): 3547 (doi: 10.5586/asbp.3547).
84. Li J.-R., Zhuang F.-Y., Ou C.-G., Hu H., Zhao Z.-W., Mao J.-H. Microspore embryogenesis and production of haploid and doubled haploid plants in carrot (Daucus carota L.). Plant Cell Tiss. Organ Cult., 2013, 112: 275-287 (doi: 10.1007/s11240-012-0235-5).
85. Вюртц Т.С., Шмыкова Н.А., Федорова М.И., Заячковская Т.В., Домблидес Е.А. Создание удвоенных гаплоидных линий моркови столовой (Daucuscarota L.) с использованием биотехнологических методов. Вестник защиты растений, 2016, 3(89): 43-44.
86. Mineikina A., Bondareva L., Domblides E. The economic benefits of the production of double haploid for selection of white cabbage. IOP Conference Series: Earth and Environmental Science, 2019, 395: 012081 (doi: 10.1088/1755-1315/395/1/012081).
87. Vurtz T., Domblides E., Soldatenko A. Economic efficiency of obtaining carrot lines using classical and biotechnological methods. IOP Conference Series: Earth and Environmental Science, 2019, 395: 012084 (doi: 10.1088/1755-1315/395/1/012084).
88. Шмыкова Н.А., Химич Г.А., Коротцева И.Б., Домблидес Е.А. Перспективы получения удвоенных гаплоидов растений семейства Cucurbitaceae L. Овощи России, 2015, 3(28): 28-31 (doi: 10.18619/2072-9146-2015-3-4-28-31).
89. Домблидес Е.А., Шмыкова Н.А., Заячковская Т.В., Химич Г.А., Коротцева И.Б., Кан Л.Ю., Домблидес А.С. Получение удвоенных гаплоидов в культуре неопыленных семяпочек кабачка (CucurbitapepoL.). В сб.: Биотехнология как инструмент сохранения биоразнообразия растительного мира (физиолого-биохимические, эмбриологические, генетические и правовые аспекты). Симферополь, 2016: 28-29.
90. Домблидес ЕА., Шмыкова Н.А., Белов С.Н., Коротцева И.Б., Солдатенко А.В. Получение DH-растений огурца (Сucumis sativus l.) в культуре неопыленных семяпочек in vitro. ОвощиРоссии, 2019, 6: 3-9 (doi: 10.18619/2072-9146-2019-6-3-9).
91. Chen J., Vanek E., Pieper M. Method for producing haploid, dihaploid and doubled haploid plants by isolated microspore culture. A01H 1/00 (2006.01). Application filed by Vilmorin and Cie (FR). № PCT/EP20 16/067825. Priority data 26.07.2016. Publication 02.02.2017 WO 2017/017108A1.
92. Lofti M., Alan A.R., Henning M.J., Jahn M.M., Earle E.D. Production of haploid and double haploid plants of melon (Cucumis melo L.) for use in breeding for multiple virus resistance. Plant Cell Rep.,2003, 21(11): 1121-1128 (doi: 10.1007/s00299-003-0636-3).
93. Baktemur G., Taşkın H., Buyukalaca S. Comparison of different methods for separation of haploid embryo induced through irradiated pollen and their economic analysis in melon (Cucumis melo var. inodorus). The Scientific World Journal,2013, 10: 529502 (doi: 10.1155/2013/529502).
94. Galązka J., Niemirowicz-Szczytt K. Review of research on haploid production in cucumber and other cucurbits. Folia Horticulturae, 2013, 25(1): 67-78 (doi: 10.2478/fhort-2013-0008).
95. Galazka J., Slomnicka R., Goral-Radziszewska K., Niemirowicz-Szczytt K. From pollination to DH-lines — verification and optimization of protocol for production of double haploids in cucumber. Acta Scientiarum Polonorum Hortorum Cultus, 2015, 14(3): 81-92.
96. Домблидес Е.А., Шмыкова Н.А., Химич Г.А., Коротцева И.Б., Домблидес А.С. Образование аномальных цветков в потомстве удвоенных гаплоидов кабачка (Cucurbita pepo L.). ОвощиРоссии, 2018, 5(43): 13-17 (doi: 10.18619/2072-9146-2018-5-13-17).
97. Домблидес Е.А., Кан Л.Ю., Химич Г.А., Коротцева И.Б., Домблидес А.С. Цитологическая оценка удвоенных гаплоидов кабачка (Cucurbita pepo L.).Овощи России, 2018, 6(44): 3-7 (doi: 10.18619/2072-9146-2018-6-3-7).
98. Kochieva E.Z., Suprunova T.P. Identification of inter- and intraspecific polymorphism in tomato. Genetika, 1999, 35(10): 1386-1389.
99. Домблидес Е.А., Домблидес А.С., Заячковская Т.В., Бондарева Л.Л. Определение типа цитоплазмы у растений семейства капустные (Brassicaceae Burnett) с помощью ДНК маркеров. Вавиловский журнал генетики и селекции, 2015, 19(5): 529-537 (doi: 10.18699/VJ15.069).
100. Пышная О.Н., Мамедов М.И., Шмыкова Н.А., Шумилина Д.В., Супрунова Т.П., Джос Е.А., Матюкина А.А. Использование классических и современных методов в селекции перца Capsicum L. Труды Кубанского государственного аграрного университета, 2015, 55: 213-216.
101. Супрунова Т.П., Логунов А.Н., Логунова В.В., Агафонов А.Ф. Определение типа цитоплазматической мужской стерильности лука репчатого (Allium cepa L.) селекции ВНИИССОК с помощью молекулярных маркеров. Овощи России, 2011, 4(13): 20-21.
102. Домблидес А.С. Поиск генисточников признака стерильности у образцов лука репчатого с использованием ДНК маркеров. Овощи России, 2019, 5: 15-19 (doi: 10.18619/2072-9146-2019-5-15-19).
103. Химич Г.А. Новые сорта тыквенных культур ВНИИССОК. Овощи России, 2016, 1(30): 48-49 (doi: 10.18619/2072-9146-2016-1-48-49).
104. Пивоваров В.Ф., Шмыкова Н.А., Бондарева Л.Л., Заблоцкая Е.А. Полиморфизм удвоенных гаплоидных линий капусты брокколи, полученных в культуре микроспор in vitro. Вестник Российской сельскохозяйственной науки, 2015, 5: 33-35.

ORCID:
Pivovarov V.F. orcid.org/0000-0001-9522-8072
Pyshnaya O.N. orcid.org/0000-0001-9744-2443
Soldatenko A.V. orcid.org/0000-0002-9492-6845
Gurkina L.K. orcid.org/0000-0002-8384-2857

The review presents the history of the Gribovskaya Vegetable Breeding Experimental Station, the first in Russia and the USSR for vegetable breeding and seed production, on the basis of which the All-Russian Research Institute of Vegetable Breeding and Seed Production was established, farther reorganized into the Federal Research Center for Vegetable Growing. The center’s activity dates back to 1920, when, under the leadership of Sergei I. Zhegalov, a theoretical and practical basis for the development of domestic breeding was laid. The century-old anniversary of the selection of vegetable crops allows us to trace the way of its formation in Russia, successes and future development. Since 1920, scientists paid much attention to the development and improvement of breeding methods that increase the efficiency of selection, as well as to accelerate the selection process to create targeted varieties and hybrids. With regard to the main vegetable crops, methods have been developed for interspecific hybridization (N.I. Timin et al., 2013; A.F. Agafonov et al., 2018), molecular labeling (T.P. Suprunova et al., 2011; E.A. Domblides et al., 2015), clonal micropropagation and production of doubled haploids successfully used in breeding (M.S. Bunin et al., 2004). Basic protocols have been proposed for in vitro culture of microspore for most cabbage crops (E.A. Domblides et al., 2016) and non-pollinated ovules for Cucurbitaceae (N.A. Shmykova et al., 2015). A technology has been developed for the production of doubled haploids in carrots in in vitro cultures of anthers, non-pollinated ovules and microspores (T.S. Wurtz et al., 2016). The economic benefit of modern biotechnological in vitro methods when creating hybrids has been proven: the time for creating hybrids is reduced from 12 to 6 years, financial costs are reduced 2 times (A. Mineikina et al., 2019; T. Vurtz et al., 2019). The aggravated situation with plant diseases and the expansion of the areas of new harmful pathogens on vegetable crops are discussed. Based on immunological, molecular and morphophysiological tests at artificial, provocative and natural infections, the sources of resistance to economically significant diseases are identified, in cabbage to Plasmodiophora brassicae, in table beet to Cercospora beticola, in vegetable beans to viral diseases, in onions to Peronospora destructor (I.A. Engalycheva et al., 2019). Physiological and biochemical methods are widely used when creating varieties with a high content of biologically active substances and antioxidants. Technologies have been developed for obtaining functional food products, including new types of teas with a therapeutic and prophylactic effect, soft drinks, food dyes, and confectionery (M.S. Gins et al., 2017). Recipes for gluten-free bakery products have been created using introduced yacon, amaranth and daikon cultures. Technologies for selenium enrichment of vegetable crops for fresh consumption and as raw materials for functional products have been developed (N.A. Golubkina et al., 2018). The intellectual potential accumulated over a hundred-year history is inextricably linked with the traditions laid down at the experimental station. Nowadays the Federal Research Center for Vegetable Growing coordinates scientific research on the selection, production and processing of vegetable and melon crops in Russia within the framework of state programs for the development of the industry and ensuring food security.

Keywords: history, anniversary, research, varieties, vegetables, breeding, biotechnology, immunity, molecular marking, biochemistry, functional products.