БИОЛОГИЯ РАСТЕНИЙ
БИОЛОГИЯ ЖИВОТНЫХ
ПЕЧАТНАЯ ВЕРСИЯ
ЭЛЕКТРОННАЯ ВЕРСИЯ
 
КАК ПОДАТЬ РУКОПИСЬ
 
КАРТА САЙТА
НА ГЛАВНУЮ

 

 

 

 

doi: 10.15389/agrobiology.2022.4.776rus

УДК 636.2:619:579.62:579.842.11

Исследование выполнено при финансовой поддержке Правительства Пермского края в рамках научного проекта № С-26/541.

 

КОЛИБАКТЕРИОЗ КРУПНОГО РОГАТОГО СКОТА В ПЕРМСКОМ КРАЕ: РАСПРОСТРАНЕННОСТЬ, ИСТОЧНИКИ ВОЗБУДИТЕЛЯ И ЕГО БИОЛОГИЧЕСКИЕ ОСОБЕННОСТИ

И.Н. ЖДАНОВА1, В.В. МОКРУШИН2, М.В. КУЗНЕЦОВА3 ✉

Инфекционные заболевания в животноводческих хозяйствах Российской Федерации ежегодно регистрируются у 50 % поголовья, при этом падеж молодняка в первые недели жизни составляет от 14 до 60 %. Колибактериоз по заболеваемости и летальности, несмотря на широкое использование современных антибиотиков и вакцин, остается основной инфекционной патологией животных. В настоящей работе для оценки распространенности колибактериоза среди крупного рогатого скота на сельскохозяйственных предприятиях в Пермском крае и выявления источника возбудителя инфекции впервые применен комплексный подход (больные животные—здоровые животные—окружающая среда), что имеет теоретическое значение, углубляя понимание закономерностей эпизоотического процесса при этом заболевании. Важным практическим аспектом работы стал анализ данных многолетних санитарно-зоогигиенических исследований, результаты которых свидетельствуют, что внутрихозяйственный контроль риска заражения животных и персонала предприятий диареегенными эшерихиями должен распространяться не только на естественный резервуар, но и на окружающую среду. Цель исследования — оценить распространенность колибактериоза крупного рогатого скота в хозяйствах Пермского края и описать биологические свойства возбудителя. Для осуществления контроля обсемененности эшерихиями оборудования, кормов и системы поения в животноводческих хозяйствах был проведен анализ данных санитарно-зоогигиенических исследований. Изучение динамики заболеваемости крупного рогатого скота бактериальными инфекциями проводили на основании отчетности Пермского ветеринарного диагностического центра, отдела животноводства Министерства сельского хозяйства Пермского края за 2010-2020 годы, статистических данных Департамента ветеринарии Пермского края и лабораторных журналов. В отчетность вошли результаты бактериологического исследования (22480 проб), взятых на предприятиях мясного и молочного животноводства всех категорий (n = 146). Санитарно-зоогигиенические исследования (29207 проб) проводили на этих же предприятиях. В динамике анализировали смывы с молочного оборудования, инвентаря боенских предприятий, исследовали корма растительного и животного происхождения, комбикорма. Бактериологическое исследование проводили согласно «Методическим указаниям по бактериологической диагностике колибактериоза (эшерихиоза) животных» (М., 2000). Изучали антигенную структуру выделенных штаммов Escherichia coli. Чувствительность штаммов к антибактериальным препаратам определяли согласно МУК 4.2.1890-04. Штаммы были проверены диско-диффузионным методом на чувствительность к ампициллину (10 мкг), цефокситину (30 мкг), цефтриаксону (30 мкг), цефепиму (30 мкг), меропенему (10 мкг), имипенему (10 мкг), азтреонаму (30 мкг), амикацину (30 мкг), гентамицину (10 мкг), ципрофлоксацину (5 мкг), левофлоксацину (5 мкг) моксифлоксацину (5 мкг), тетрациклину (30 мкг), хлорамфениколу (30 мкг). В проспективном исследовании (2020-2021 годы) оценивали распространенность штаммов E. coli, продуцирующих шига-токсин (STEC), в популяции здоровых животных. Культуры (n = 61) были выделены на предприятиях промышленного животноводства Пермского края из фекалий КРС. Гены шига-токсина (stx1 и stx2) детектировали с помощью полимеразной цепной реакции по конечной точке. Результаты проведенных исследований показали, что в Пермском крае в 2010-2020 годы эпизоотическая ситуация по колибактериозу телят была достаточно благоприятной: его доля среди всех бактериальных инфекций не превышала 20 %. Отмечено увеличение числа регистраций павших и больных животных с диарейным синдромом на фоне снижения иммунизации стельных коров. Эпизоотический процесс характеризовался наличием спорадических заболеваний, при этом отмечался высокий риск передачи возбудителя инфекции горизонтальным путем, в том числе через объекты внешней среды. Наиболее часто эшерихий выделяли из смывов с молочного оборудования и инвентаря боенских предприятий, а также выявляли в комбикормах. Мы идентифицировали пять наиболее эпизоотически значимых серогрупп — О8, О15, О20, О101, О115, в единичных случаях были выявлены E. coli О157. Профили антибиотикоустойчивости штаммов E. coli, выделенных от больных, павших (первая группа) и здоровых животных (вторая группа), существенно не различались, за исключением достоверно повышенной резистентности к тетрациклину и хлорамфениколу у эшерихий от первой группы животных. У здорового крупного рогатого скота в субпопуляции эшерихий следует отметить более высокий удельный вес культур, резистентных к ампициллину и ципрофлоксацину. Кроме того, у эшерихий от здоровых животных были детектированы гены stx1 (2,0 %) и stx2 (6,1 %), то есть наши исследования подтверждают, что возбудители инфекционных заболеваний могут быть выделены из желудочно-кишечного тракта не только больных, но и здоровых сельскохозяйственных животных, которые становятся источником STEC. Дополнительными источниками заражения крупного рогатого скота эшерихиями, в том числе STEC-штаммами, на фермах служит питьевая вода, корма и другие абиотические компоненты экологической системы.

Ключевые слова: крупный рогатый скот, колибактериоз, Escherichiacoli, шига-подобный токсин, контаминация, объекты внутрихозяйственной среды.

 

 

CATTLE COLIBACILLOSIS IN PERM KRAI: PREVALENCE, SOURCES OF THE CAUSATIVE AGENT AND ITS BIOLOGICAL CHARACTERIZATION

I.N. Zhdanova1, V.V. Mokrushin2, M.V. Kuznetsova3

Infectious diseases in agricultural enterprises of the Russian Federation are annually recorded in 50 % of the livestock, while the death of young calves during the first weeks of life ranges from 14 to 60 %. Colibacillosis remains the main infectious pathology in terms of morbidity and mortality, despite the widespread use of modern antibiotics and vaccines. To assess the prevalence of colibacillosis among cattle and identify the source of the infectious agent, for the first time an integrated approach was used covering a triad of sick animals—healthy animals—environment, which is of theoretical significance because it contributes to a better understanding the patterns of the epizootic process. An important practical aspect of the work was the analysis of data from long-term sanitary and zoo-hygienic records, which indicates that the control of the risk of Escherichia coli infections should be aimed not only at the natural reservoirs but also at the environment factors. The purpose of the study was to assess the prevalence of colibacillosis in cattle in various agricultural enterprises of the Perm Territory and to study the biological properties of the pathogen. To assess the Escherichia coli contamination of inventory, feeding and watering systems, data from sanitary and zoo-hygienic studies were analyzed. The incidence of the infections in cattle was summarized based on the reports from the Perm Veterinary Diagnostic Center, the livestock department of the Ministry of Agriculture of the Perm Krai for 2010-2020, statistical data from the Department of Veterinary Medicine of the Perm Krai and form laboratory records. The reports also covered bacteriological data for 22,480 samples from beef and dairy farms (n = 146). Sanitary and zoo-hygienic analyses of swabs from dairy equipment, inventory of slaughterhouses, feed of plant and animal origin, mixed feed were carried out for 29,207 samples from the same farms. The antigenic structure of the E. coli isolates was determined. The sensitivity of strains to antibacterial drugs was assayed by disk diffusion method (ampicillin 10 µg, cefoxitin 30 µg, ceftriaxone 30 µg, cefepime 30 µg, meropenem 10 µg, imipenem 10 µg, aztreonam 30 µg, amikacin 30 µg, gentamicin 10 µg, ciprofloxacin 5 µg, levofloxacin 5 µg, moxifloxacin 5 µg, tetracycline 30 µg, chloramphenicol 30 µg). In a prospective study (2020-2021), the prevalence of Shiga toxin-producing E. coli (STEC) strains in a population of healthy animals was assessed. Cultures (n = 61) were isolated from cattle feces. Genes encoding Shiga toxins 1 and 2 (stx1 and stx2) were detected by polymerase chain reaction at the end point. The research results indicate that in recent years the prevalence of colibacillosis in the Perm Krai does not exceed 20 %. An increased number of dead animals and sick animals with diarrheal syndrome corresponded to a decreased immunization of pregnant cows. There were sporadic cases of the disease, but the risk of horizontal transmission of the pathogen, including through environmental objects, was high. E. coli was mostly isolated from swabs from dairy equipment and inventory of slaughterhouses, as well as from animal feed. Five most epizootically significant serogroups were identified, the E. coli O8, O15, O20, O101, and O115; in rare cases, E. coli O157 was isolated. The antibiotic resistance profiles of E. coli strains isolated from sick, dead and healthy animals did not differ significantly, except for tetracycline and chloramphenicol, resistance to which was significantly higher in E. coli strains of the first group. Of note is the higher proportion of cultures resistant to ampicillin and ciprofloxacin in the E. coli subpopulation from healthy cattle. In addition, the stx1 (2.0 %) and stx2 (6.1 %) genes were found in E. coli from healthy cattle. That is, our data confirm that pathogens can persist in the gastrointestinal tract of both sick and healthy farm animals, which become the source of STEC. Additional sources of E. coli infection, including STEC strains, are drinking water, feed, and other abiotic components.

Keywords: cattle, colibacillosis, Escherichia coli, Shiga-like toxins, on-farm contamination.

 

1Пермский НИИ сельского хозяйства
филиал ПФИЦ УрО РАН,
614532 Россия, с. Лобаново, ул. Культуры, 12,
e-mail: saratov_perm@mail.ru;
2ГБУВК Пермский ветеринарный диагностический центр,
614065 Россия, г. Пермь, ул. Экскаваторная, 35,
e-mail: 89124892212@mail.ru;
3Институт экологии и генетики микроорганизмов
УрО РАН — филиал ПФИЦ УрО РАН,

614000 Россия, г. Пермь, ул. Голева, 13,
e-mail: mar@iegm.ru

Поступила в редакцию
30 марта 2022 года

 

назад в начало

 


СОДЕРЖАНИЕ

 

 

Полный текст PDF

Полный текст HTML