Сельскохозяйственная биология, 2009, № 4, с. 67-70.

УДК 636.52/.58:577.125:591.3

АДАПТОГЕННЫЙ ЭФФЕКТ ОБРАБОТКИ ИНКУБАЦИОННЫХ ЯИЦ ГЛИЦИНАТОМ ЛИТИЯ ПРИ ОКИСЛИТЕЛЬНОМ СТРЕССЕ, ВЫЗВАННОМ ПЛАНОВОЙ ВАКЦИНАЦИЕЙ ЦЫПЛЯТ РОДИТЕЛЬСКОГО СТАДА

В.А. ЛУКИЧЕВА

В условиях научно-производственного опыта оценивали влияние аэрозольной обработки инкубационных яиц на динамику показателей, характеризующих эритро- и лимфопоэз, активность перекисного окисления липидов и антиоксидантной системы у полученных из них цыплят-бройлеров кросса Конкурент 3 на фоне технологического стресса, вызванного вакинацией против болезни Марека.

Ключевые слова: куры, технологический стресс, глицинат лития, супероксиддисмутаза (СОД), каталаза, общие липиды, малоновый диальдегид, диеновые и кетодиеновые конъюгаты, болезнь Марека.

В условиях современного промышленного производства актуальна проблема простых и эффективных методов коррекции стрессовых состояний птицы (1-3). Известно, что при стрессе значительно снижается естественная резистентность, продуктивные и репродуктивные качества, повышается отход молодняка, увеличиваются затраты энергии корма на производство единицы продукции и ее себестоимость. Коррекцию состояния птицы проводят посредством селекции на стрессоустойчивость, контроля показателей микроклимата в производственных помещениях, а также соответствия условий кормления энергетическим потребностям.

Применение органической соли глицината лития положительно влияет на птицу при окислительном стрессе, подавляя перекисное окисление липидов (4) и повышая активность антиоксидантной системы защиты (5-7). Антиоксиданты оказывают адаптогенное действие, предотвращая активацию свободнорадикального окисления, вызываемого стрессорами (например, при вакцинации против болезни Марека) (8-10).

Целью нашей работы было изучение влияния глицината лития на антиоксидантную систему защиты, перекисное окисление липидов и гематологические показатели у цыплят родительского стада кросса Конкурент 3 при промышленном стрессе, вызванном вакцинацией против болезни Марека. 

Методика. Научно-производственные опыты и клинические исследования проводили в ГУП ППЗ «Конкурсный» (Сергиево-Посадский р-н, Московская обл.) на яйцах родительского стада бройлеров кросса Конкурент 3 и полученных из них цыплятах. По принципу аналогов сформировали опытную и контрольную группу яиц (в каждой — по 420 шт. массой 60-63 г) от 280-320-суточных несушек. В контрольной группе яйца не обрабатывали, в опыте — однократно обрабатывали аэрозолем глицината лития при переводе на вывод (12 % раствор в пересчете на катион Li) в дезинфекционной камере с помощью струйного аэрозольного генератора САГ-1 (Россия) (доза — 1 мл/лоток, время пребывания в аэрозольном облаке — 30 мин) для снятия стресса, вызываемого вакцинацией в первые часы жизни цыплят.

Яйца инкубировали в шкафах «Универсал-55» (Россия) с последующим переводом на вывод (температурно-влажностный режим соответствовал стандартам, принятым на птицефабриках).

В первые часы жизни (до 1-суточного возраста) ремонтный молодняк бройлеров кросса Конкурент 3 иммунизировали против болезни Марека вакциной «АВИВАК-МАРЕК» (Россия), изготовленной из штаммов аттенуированного вируса болезни Марека.

Материалом для биохимических исследований служила цельная кровь, стабилизированная 20 % цитратом натрия (5-7 капель на 5 мл крови), и сыворотка крови цыплят. У особей 1-суточного возраста кровь отбирали при декапитации, 30- и 52-суточного — из подкрыльцовой вены. Число эритроцитов и лейкоцитов подсчитывали в камере Горяева (11). Содержание гемоглобина определяли спектрофотометрически (TermoSpectronic Helios beta, Великобритания) гемоглобин-цианидным методом с использованием диагностического набора фирмы «Лахема» (Чехия), гематокрит — общепринятым методом; в сыворотке крови концентрацию общих липидов и малонового альдегида измеряли, применяя соответствующие наборы реагентов («Агат», Россия) (12), диеновых и кетодиеновых конъюгатов — модифицированным методом Плацера (12). Состояние антиоксидантной системы оценивали по активности супероксиддисмутазы (СОД) и каталазы (13).

Статистическую обработку данных выполняли с помощью компьютерной программы Biostatic.

Результаты. К 52-м сут число эритроцитов в крови птицы в контроле возросло на 29,29 %, в опыте — в 2 раза относительно значения, зарегистрированного у суточных цыплят. У цыплят в опытной группе этот показатель увеличился на 30-е и 52-е сут соответственно на 44,07 и 40,38 % (Р < 0,001) по сравнению с контролем (табл.).

Число лейкоцитов к 52-м сут в контроле и опыте возросло соответственно на 14,04 и 12,05 % (без достоверных различий между группами). В период роста в крови у особей из контрольной группы отмечалась тенденция сначала к снижению содержания гемоглобина (на 30-е сут на 30,18 %), затем к его увеличению (на 52-е сут по сравнению с 1-ми — на 4,59 %). У птицы из опытной группы этот показатель возрастал на протяжении всего периода наблюдения, и на 52-е сут был на 17,46 % больше, чем на 1-е сут. В опытной группе по сравнению с контролем содержание гемоглобина оказалось достоверно выше: на 30-е сут — на 48,41 %, на 52-е сут — на 12,31 %.

Гематокрит на 1-30-е сут имел тенденцию к возрастанию как в контроле (на 58,16 %), так и в опыте (на 32,94 %), однако к 52-м сут этот показатель снизился по сравнению с 30-ми сут соответственно с 37,8 до 37,0 % и с 33,5 до 30,0 %. В опыте по сравнению с контролем гематокрит был достоверно ниже как на 30-е (на 11,38 %), так и на 52-е сут (на 18,92 %). 

Количество общих липидов в сыворотке крови птицы в контрольной и опытной группе с возрастом уменьшалось, причем в опыте у цыплят всех возрастов оно было ниже (см. табл.): у 1- и 30-суточных — достоверно (соответственно на 46,89 и 20,12 %), у 52-суточных — недостоверно.

С возрастом у птицы как в опытной, так и в контрольной группе содержание малонового диальдегида в сыворотке крови снижалось, оставаясь в опыте всегда достоверно ниже, чем в контроле: на 1-е сут — на 17,87 %, на 30-е — на 49,78 % и на 52-е — на 12,23 %.

Концентрация диеновых и кетодиеновых конъюгатов также уменьшалась у цыплят в обеих группах и в опытной группе всегда была достоверно ниже, чем в контрольной: на 1-е, 30-е и 52-е сут — соответственно на 18,94; 25,57 и 57,14 % и на 18,29; 45,57 и 59,26 %.

Активность каталазы у цыплят из контрольной группы к 30-м сут снижалась (на 32,32 %), к 52-м — повышалась (см. табл.), из опытной — постоянно снижалась (с 1-х до 52-х сут — на 31,34 %). В 1-е сут различия по активности каталазы между цыплятами в опыте и контроле были недостоверны, на 30-е сут этот показатель у особей из опытной группы достоверно возрастал (на 14,77 %), к 52-м сут — достоверно снижался (на 30,97 %) по сравнению с контролем.

Как в опыте, так и в контроле активность СОД сначала уменьшалась, затем возрастала, оставаясь в первом варианте достоверно меньше, чем во втором: в 1-е, на 30-е и 52-е сут — соответственно на 55,54; 48,31 и 33,07 %.

Таким образом, в условиях промышленного стресса, вызванного плановой вакцинацией против болезни Марека (и сопровождающего его окислительного стресса), у цыплят, которые получены из инкубационных яиц, обработанных аэрозолем глицината лития, отмечается усиление эритропоэза и, как следствие, повышение содержания гемоглобина в крови. На лимфопоэз обработка достоверно не влияет. Кроме того, у птицы нормализуется содержание общих липидов и падает интенсивность перекисного окисления липидов, что проявляется в уменьшении количества малонового диальдегида, диеновых и кетодиеновых конъюгатов, а также повышается активность системы антиоксидантной защиты, о чем свидетельствует снижение активности каталазы и супероксиддисмутазы к 52-м сут эксперимента.   

Л И Т Е Р А Т У Р А

1. К а р м о л и е в  Р.Х.,  Л у к и ч е в а  В.А. Биохимические механизмы повышения естественной резистентности организма цыплят-бройлеров. Ветеринария, 1999, 1: 12-14.
2. З а в о л о к а  А.А. Методы функционального исследования системы крови здоровых кур и при лейкозе. Ветеринария, 1998, 2: 14-15.
3. Г о р и з о н т о в  П.Д.,  Б е л о у с о в а  И.М.,  Ф е д о т о в а  М.И. Стресс и система крови. М., 1983.
4. З е н к о в  Н.К.,  Л а н к и н  В.З.,  М е н ь щ и к о в а  Е.Б. Окислительный стресс: биохимические и патофизиологические аспекты. М., 2001.
5. Ж у р а в л е в  А.И. Лекция. Свободнорадикальная биология. М., 1993: 3-18.
6. Ж у р а в л е в  А.И.,  З у б к о в а  С.М. Антиоксиданты. Свободно-радикальная патология. М., 2008.
7. Ж у р а в л е в  А.И.,  П а н т ю ш е н к о  В.Т. Свободнорадикальная патология и методы ее профиликтики биоантиокислителями. С.-х. биол., 1989, 2: 17-24.
8. К а р м о л и е в  Р.Х. Биохимические процессы при свободнорадикальном окислении и антиоксидантной защите. С.-х. биол., 2002, 2: 19-28.
9. К а р м о л и е в  Р.Х.,  В а с и л ь е в  А.В. Состояние антиоксидантных систем защиты организма цыплят при токсической дистрофии. Ветеринария, 2001, 4: 23-25.
10. К а р м о л и е в  Р.Х.,  Н а й д е н с к и й  М.С.,  Л у к и ч е в а  В.А. Соотношение экз- и эндергонических процессов при воздействии на организм птицы веществ, предупреждающих окислительный стресс. Докл. РАСХН, 2001, 7: 54-58.
11. Б а ж и б и н а  Е.,  К о р о б о в  А.,  С е р е д и н а  С. и др. Методологические основы оценки клинико-морфологических показателей крови домашних животных. М., 2007.
12. К а м ы ш н и к о в  В.С. Справочник по клинико-биохимической лабораторной диагностике (в  2 томах). Т. 2. Минск, 2003.
13. Б у з л а м а  В.С. Методическое пособие по изучению процессов перекисного окисления липидов и антиоксидантной защиты организма животных. Воронеж, 1997.

ADAPTOGENIC EFFECT OF TREATING INCUBATORY EGGS BY LITHIUM GLYCINATE UNDER OXIDATIVE STRESS IN HENS OF PARENTAL STOCK CAUSED BY VACCINATION

V.A. Lukicheva

In the conditions of scientific-practical experiment the author estimates the influence of aerosol spraying of incubatory eggs on dynamics of the parameters which characterize the erythro- and lymphopoiesis, lipid peroxidation and antioxidant activity in broiler-chicken of the Konkurent 3 cross.

Key words: hens, technological stress, lithium glycinate, superoxid dismutase, catalase, general lipids, malonic aldehyde, dienic and ketodienic conjugates, Marek’s diseas.

Оформление электронного оттиска